Questões de Biologia do ano 2006

O retículo de Neubauer é utilizado em citometria de fluxo.

Para a contagem de eritrócitos, o método mais adequado é a fixação com metanol, coloração com corante de Wright e contagem em câmara de Fuchs.

Para a confirmação de uma possível leucopenia, é necessário realizar a coloração com peroxidase e Sudan B.

A dosagem de hemoglobina utilizando a solução de Drabkin quantifica apenas a hemoglobina extracelular, não sendo capaz de analisar a porção de hemoglobina contida nos eritrócitos.

A hemoglobina corpuscular média e o volume corpuscular médio podem ser calculados a partir dos valores de hematócrito, contagem de eritrócitos e dosagem de hemoglobina total.

A técnica de captura híbrida utiliza a hibridação de DNA e dispensa o uso de anticorpos.

A metodologia de escolha em bancos de sangue para evitar a transmissão do vírus da hepatite B por transfusão é a dosagem do anti-HBs.

O método mais sensível para a detecção do antígeno “e” do vírus da hepatite B (AgHBe) é a realização de hibridação para detecção de RNA viral.

Na fase de janela imunológica da hepatite B, as técnicas de PCR (polymerase chain reaction) não são capazes de detectar a presença do genoma viral no paciente portador do vírus.

No acompanhamento da evolução de uma infecção pelo vírus da hepatite B, é utilizada a detecção de antígenos virais e de anticorpos.

Caso haja lesão de hepatócitos, espera-se encontrar níveis séricos elevados de alanina-aminotransferase, uma vez que essa enzima catalisa uma etapa importante da síntese de bases nitrogenadas no hepatócito.

Durante uma situação de exercício intenso, o tecido muscular em exercício pode sintetizar moléculas de alanina a partir de piruvato e glutamato, enviando a alanina à circulação.

As células do sistema nervoso central humano não possuem enzimas capazes de converter alfa-cetoglutarato e amônia em glutamato.

Um aumento na concentração de fumarato é característico de deficiência em enzima do ciclo da uréia.

Em uma situação de hipoglicemia, os hepatócitos degradam lipídios para, a partir do seu produto de degradação, sintetizar moléculas de glicose.

Os componentes indicados pelos números 3, 4 e 6 na figura A são usados para definir a ampliação do material observado, porém não para ajustar o foco.

O componente indicado pelo número 7 na figura A tem função semelhante ao componente indicado por “detector” na figura C.

O espectrofotômetro ilustrado nas figuras B e C é utilizado em dosagens de enzimas.

Os equipamentos mostrados nas figuras A e B são usados rotineiramente na análise de células do sedimento urinário.

A figura A mostra um microscópio e as figuras B e C referemse a um citômetro de fluxo, ambos úteis em análises citológicas.

Uma solução contendo o aminoácido glicina pode ser usada como tampão, uma vez que a glicina apresenta duas faixas tamponantes.

Durante todo o preparo do gel, deve-se evitar que ocorra a polimerização da acrilamida, pois a acrilamida polimerizada dificulta a separação das proteínas.

É necessário o uso de tampões em eletroforese para fazer que o pKa das proteínas da amostra se mantenha constante, caso contrário esse valor será alterado.

A eletroforese de proteínas é realizada com maior facilidade em solventes apolares, por facilitarem o tamponamento.

A eletroforese de hemoglobina é realizada em um sistema diferente do mencionado acima, pois a amostra utilizada não tem característica protéica, sendo um composto orgânico de baixa massa molecular.